На фигуру произвольной формы наложена палетка число целых клеток: на фигуру произвольной формы наложина палетка .Число целых клеток палетки внутри фигура равно а число…

На фигуру произвольной формы наложена палетка. Число целых клеток палетки внутри фигуры равно a, число нецелых клеток-b. Сделай оценку и запиши

Ответы

Знаешь ответ? Добавь его сюда!

Последние вопросы

  • Математика

    19 часов назад

    Добрый времени суток будьте любезны помочь ничего не понимаю.

  • Другие предметы

    1 день назад

    39/корень из 3
  • Информатика

    2 дня назад

    Используя связанные таблицы создать:

    — Форму для ввода данных по таблице Студенты.

    — Запрос на выборку по которому из базы данных будут отобраны фамилии, имена, специализация и изучаемый язык:

    Запрос на выборку по которому из базы данных будут отобраны студенты менеджеры и изучающие английский язык;

    — По созданному запросу создать отчет с группировкой по специальности.

  • Литература

    2 дня назад

    61 балл по литературе..все очень плохо?
  • Математика

    2 дня назад

    какое аниме посмотреть подскажите

  • Физика

    3 дня назад

    на стройплощадке идет возведение здания на 6 этаже стоит рабочий какие силы действуют на рабочего и на здание если s 100м² вес 70кг

  • Химия

    4 дня назад

    Помогите пожалуйста

  • Геометрия

    4 дня назад

    Помогите пожалуйста

    1.

    2.

    2. Напишите уравнение сферы с центром в точке A(-1;1;-1) проходящей через точку N(3;4;2)

  • Математика

    4 дня назад

    Помогите решить пример,срочно!!!

    фото прикрепила

  • Физика

    5 дней назад

    помогите решить пожалуйста!!!

  • Обществознание

    7 дней назад

    47×8:2×2 решите пж этот пример срочно!!! Можно не столбиком
  • Английский язык

    7 дней назад

    Помогите пожалуйста очень срочно буду благодарен

  • Математика

    8 дней назад

    https://gamejolt. com/invite/Mukhin

  • Математика

    9 дней назад

    что делать когда скучно

    не пишите срать через окно и тому подобное

  • Геометрия

    9 дней назад

    ПОМОГИТЕ С ГЕОМЕТРИЕЙ ПОЖАЛУЙСТА, желательно с рисунком

Площадь. Единицы измерения площади. Палетка

«Площадь. Единицы измерения площади. Палетка.»

Ермакова Ирина Григорьевна

Донецк, 2022

Введение. В школьном курсе математики мы в основном имеем дело с многоугольниками. Между тем, на практике часто возникает необходимость найти площадь фигуры неправильной формы. Например, на уроке физики учитель предложил определить давление ученика на пол, и перед нами стала проблема, как определить площадь опоры (площадь подошвы ботинок) или бывает необходимость определить площадь территории по плану или карте. Но для площадей сложных фигур отсутствуют общие формулы, аналогичные формулам для многоугольников.

Цель исследования состоит в том, чтобы сравнить эффективность различных способов практического измерения площадей, как для реальных физических объектов, так и для фигур, площади которых могут быть найдены по точным формулам.

Объектом исследования являются методы измерения площади фигур произвольной формы:

1) метод взвешивания;

2) использование палетки;

3) применение точных формул.

Предметом исследования является площадь фигур произвольной формы.

Гипотеза исследования заключается в том, что площадь сложной фигуры может быть измерена приближенными методами с точностью, достаточной для практических целей.

Для доказательства гипотезы были поставлены следующие задачи:

• знакомство с понятиями измерения и погрешности измерения;

• изучение методов нахождения площади с помощью взвешивания и с помощью палетки;

• измерение с помощью методов взвешивания и палетки площадей контрольных фигур: прямоугольника, квадрата, выявление погрешностей измерения;

• измерение площадей произвольных фигур с помощью изученных методов. 2.Одним из приемов измерения площадей является палетка — сетка квадратов, нанесенной на прозрачный материал. Допустим, что на фигуру F, площадь которой надо измерить, наложена палетка. Тогда по отношению к этой фигуре можно выделить кв. двух видов:

1) кв., которые целиком лежат внутри фигуры F;

2) кв., через которые проходит контур фигуры и которые лежат частью вне, часть. Внутри фигуры F.

Как видим, такая палетка позволяет измерить площадь фигуры F лишь с невысокой точностью. Из определения площади и сути ее измерения вытекают известные правила сравнения площадей и действия над ними.

1) Если фигуры равны, то равны числен. знач. их площадей. фигуры у которых площади равны, называются равновеликие.

2) Если фигура F составлена из фигур F1, F2,… Fn, то числен. знач. площади фигуры F равно сумме числен. знач. площадей фигур F1, F2…Fn.

3) При замене ед. площади числен. знач. площади увеличивается во столько раз, во сколько новая ед. меньше старой.

Квадратная палетка представляет собой прозрачный лист, на котором нанесена сеть квадратов со сторонами 2 – 10 мм. Зная длину стороны одного квадрата и масштаб плана, можно вычислить площадь квадрата. Например, масштаб карты (плана) 1:10 000. Следовательно, площадь одного квадрата со стороной 1 см будет равна 10 000 м2 или 1 га.

Рисунок 1. – Определение площади способом палетки

Для определения площади палетку накладывают на замкнутый контур (Рисунок 1.). Площадь подсчитывается как сумма полных и неполных квадратов. Недостаток графического способа заключается в том, что количество неполных квадратов приходится оценивать на глаз. На рисунке 4.4 число полных квадратов 15, а неполных примерно равно 8,5 для каждого неполного квадрата глазомерно определяют, какую часть он составляет от полного. Следовательно, отсюда относительная ошибка определения площади палеткой составляет 1/100.

Существует бесконечное количество плоских фигур самой разной формы, как правильных, так и неправильных. Общее свойство всех фигур – любая из них обладает площадью. Площади фигур – это размеры части плоскости, занимаемой этими фигурами, выраженные в определенных единицах. Величина эта всегда бывает выражена положительным числом. Единицей измерения служит площадь квадрата, чья сторона равняется единице длины (например, одному метру или одному сантиметру). Приблизительное значение площади любой фигуры можно вычислить, умножив количество единичных квадратов, на которые она разбита, на площадь одного квадрата.

Площади плоских фигур правильной геометрической формы, например, прямоугольников, треугольников, кругов, обычно определяют с помощью косвенных измерений. Сначала измеряют линейные размеры фигуры (длину, высоту, ширину, радиус), а потом вычисляют площадь, пользуясь соответствующими математическими формулами.

Площади фигур неправильной формы (произвольных фигур) не имеют определения, определяются лишь способы их вычисления.

Если фигура имеет неправильную геометрическую форму, то ее площадь можно определить, начертив контур этой фигуры на бумаге в клеточку или с помощью палетки – листом из прозрачного материала, на который нанесена сетка линий, образующих при пересечении квадраты эталонного размера. В этом случае площадь фигуры вычисляют по формуле (2)

где n — количество целых квадратиков; k — количество нецелых квадратиков, С — площадь одного квадратика.

Для контроля расчётов площадь измеряют повторно, развернув палетку на 45° в любую сторону. Среднее значение расчётов до и после поворота и принимают за площадь искомого участка.

Площадь S измеряемой фигуры (рис.1) заключена в пределах , где – площадь фигуры, состоящей из квадратиков, полностью находящихся внутри контура измеряемой фигуры, а – площадь фигуры, состоящей из указанных квадратиков, а также квадратиков, пересекаемых контуром. По формулам (1) получаем: .

Количество квадратиков, пересекаемых контуром, определяет, во сколько раз погрешность больше, чем половина единицы измерения – площади эталонного квадрата. Поэтому способ измерения палеткой не слишком точен. Для измерения площади с меньшей погрешностью нужно измерять некоторую вспомогательную величину, по которой можно легко восстановить значение площади, и для которой существуют измерительные приборы со шкалой, позволяющие измерять вспомогательную величину с наименьшей возможной погрешностью – половиной цены деления шкалы.

Метод измерения вспомогательной величины придуман еще в древности и заключается в измерении массы плоской копии измеряемой фигуры. Если толщина листа, из которого изготовлены взвешиваемая фигура, постоянна, то масса фигуры прямо пропорциональна ее площади. Нужно нанести на плотную бумагу квадрат, площадь которого S0 точно известна, вырезать его и определить на весах его массу m0. На такую же бумагу перенести фигуру с искомой площадью S. Вырезать фигуру и определите её массу m. Затем, пользуясь правилом пропорции – S/S0 = m/m0, вычислить искомую площадь.

Тогда . (3)

В качестве измеряемых фигур были взяты фигуры в форме ладони и подошвы. В качестве эталонных фигур были взяты квадрат со стороной 10 см (эталон 1) и прямоугольник со сторонами 15 см и 6 см (эталон 2), изготовленные из картона. Площадь эталонных фигур можно найти по известным формулам:

.

Для выполнения этой части работы были изготовлены палетки I и II с сеткой 1смсм и 0,5см0,5см.

На палетке I эталон 1: 1кв.ед.=1 см2

n=77

k=38

S1=77 кв.ед.

S2=115 кв.ед.

S= (77+115)/2=96 см2

= (115-77)/2=19

На палетке II эталон 1: 1кв.ед.=0,25 см2

n=364

k=68

S1=364 кв. ед.

S2=432 кв.ед.

S= ((364+432)/2)0,25=94,5 см2

= ((432-364)/2)0,25=8,5

На палетке I эталон 2: 1кв.ед.=1 см2

n=72

k=40

S1=72 кв. ед.

S2=112 кв. ед.

S= (72+112)/2=92 см2

= (112-72)/2=20

На палетке II эталон 2: 1кв.ед.=0,25 см2

n=330

k=68

S1=330 кв. ед.

S2=398 кв. ед.

S= ((330+398)/2)0,25=91 см2

= ((398-330)/2)0,25=8,5

На палетке I фигура1(ладонь): 1кв.ед.=1 см2

n=75

k=90

S1=75 кв. ед.

S2=165 кв. ед.

S= (75+165)/2=120 см2

= (165-75)/2=45

На палетке II фигура1(ладонь): 1кв. ед.=0,25 см2

n=453

k=126

S1=330 кв. ед.

S2=398 кв. ед.

S= ((453+579)/2)0,25=129 см2

=( (579-453)/2)0,25=15,75

На палетке I фигура2(подошва): 1кв.ед.=1 см2

n=142

k=50

S1=142 кв. ед.

S2=192 кв. ед.

S= (142+192)/2=167 см2

= (192-142)/2=25

На палетке II фигура 2(подошва): 1кв.ед.=0,25 см2

n=640

k=86

S1=640 кв. ед.

S2=726 кв. ед.

S= ((640+726)/2)0,25=170,75 см2

= ((726-640)/2)0,25=10,75

Алгоритм вычисления площади с помощью палетки:

1. Наложите палетку на фигуру.

2. Сосчитайте число m, целых клеток внутри фигуры.

3. Сосчитайте число n неполных клеток фигуры и разделите это число на 2.

4. Вычислите значение площади по формуле: S= m + n: 2 (если число – n нечетно, то увеличить или уменьшить его на 1).

Выводы

Как показали проведенные исследования, и метод взвешивания, и измерение площади с помощью палетки являются пригодными для приближенного нахождения площадей фигур сложной формы.

Гипотеза исследования подтверждена.

Точность измерений можно повысить, используя более точные весы или палетки, с разбиением на более мелкие квадратики или площадь измеряют повторно, развернув палетку на 45° в любую сторону. Среднее значение расчётов до и после поворота и принимают за площадь искомого участка.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ:

1. Р.И. Малафеев. Творческие задания по физике VI-VII.

2. Гирке Р., Шпрокхоф Г. Эксперимент по курсу элементарной физики. Часть I. – М.: Учпедгиз, 1959. 368 с.

3. Атанасян Л.С., В.Ф. Бутузов, С.Б. Кадомцев и др. Геометрия. 7-9 классы учебник — 3-е изд. — М.: Просвещение, 2014. — 383 с.

4. Болтянский В. О понятиях площади и объема // Научно-популярный физико-математический журнал «Квант» 1977. — №5

5. Новиков И. Метод площадей // Научно-популярный физико-математический журнал «Квант» — 1971. — №12.

6. Садовский Л., Садовский А. Как измеряют площадь? // Научно-популярный физико-математический журнал «Квант». — 1973. — №10.

Микродомен STIM1-ORAI1 — PMC

1. Putney JW., Jr Модель регулируемого рецептором проникновения кальция. Клеточный кальций. 1986; 7: 1–12. [PubMed] [Google Scholar]

2. Путни Дж. В., мл. Еще раз о емкостном введении кальция. Клеточный кальций. 1990; 11: 611–624. [PubMed] [Google Scholar]

3. Penner R, Matthews G, Neher E. Регуляция притока кальция вторичными мессенджерами в тучных клетках крыс. Природа. 1988; 334: 499–504. [PubMed] [Google Scholar]

4. Matthews G, Neher E, Penner R. Активированный вторичным мессенджером приток кальция в перитонеальные тучные клетки крыс. Дж. Физиол. 1989;418:105–130. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

5. Lewis RS, Cahalan MD. Митоген-индуцированные колебания цитозольного Ca 2+ и трансмембранного Ca 2+ тока в лейкемических Т-клетках человека. Сотовый Регул. 1989; 1: 99–112. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

6. Hoth M, Penner R. Истощение запасов внутриклеточного кальция активирует ток кальция в тучных клетках. Природа. 1992; 355:353–356. [PubMed] [Google Scholar]

7. Хот М., Пеннер Р. Активированный высвобождением кальция ток кальция в тучных клетках крыс. Дж. Физиол. 1993;465:359–386. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

8. Zweifach A, Lewis RS. Митоген-регулируемый ток Са 2+ Т-лимфоцитов активируется истощением внутриклеточных запасов Са 2+ . Proc Natl Acad Sci USA. 1993;90:6295–6299. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

9. Roos J, DiGregorio PJ, Yeromin AV, Ohlsen K, Lioudyno M, Zhang S, Safrina O, Kozak JA, Wagner SL, Cahalan MD, Velicelebi G, Stauderman КА. STIM1, важный и консервативный компонент депо-управляемого Ca 2+ функция канала. Джей Селл Биол. 2005; 169: 435–445. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

10. Liou J, Kim ML, Heo WD, Jones JT, Myers JW, Ferrell JE, Jr, Meyer T. STIM — датчик Ca 2+ , необходимый для Ca 2+ -вызванное истощением запасов Ca 2+ приток. Карр Биол. 2005; 15:1235–1241. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

11. Feske S, Gwack Y, Prakriya M, Srikanth S, Puppel SH, Tanasa B, Hogan PG, Lewis RS, Daly M, Rao A. Мутация в Orai1 вызывает иммунный дефицит, нарушая функцию канала CRAC. Природа. 2006;441:179–185. [PubMed] [Google Scholar]

12. Виг М., Пайнелт С., Бек А., Кумоа Д.Л., Рабах Д., Коблан-Хуберсон М., Крафт С., Тернер Х. , Флейг А., Пеннер Р., Кинет Дж. П. CRACM1 представляет собой белок плазматической мембраны, необходимый для депо-управляемого проникновения Ca 2+ . Наука. 2006; 312:1220–1223. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

13. Чжан С.Л., Еромин А.В., Чжан XH, Ю.Ю., Сафрина О., Пенна А., Роос Дж., Стаудерман К.А., Кахалан М.Д. Полногеномный скрининг РНКи притока Ca 2+ идентифицирует гены, которые регулируют Ca 2+ активация высвобождения Ca 2+ активность канала. Proc Natl Acad Sci USA. 2006; 103:9357–9362. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

14. Cahalan MD. СТИМУЛИРУЮЩИЙ вход Ca 2+ в магазине. Nat Cell Biol. 2009; 11: 669–677. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

15. Hogan PG, Lewis RS, Rao A. Молекулярная основа передачи сигналов кальция в лимфоцитах: STIM и ORAI. Анну Рев Иммунол. 2010; 28: 491–533. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

16. Соболофф Дж. , Ротберг Б.С., Мадеш М., Гилл Д.Л. Белки STIM: преобразователи динамических сигналов кальция. Nat Rev Mol Cell Biol. 2012; 13: 549–565. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

17. Гудлур А., Чжоу Ю., Хоган П.Г. Взаимодействия STIM-ORAI, которые контролируют канал CRAC. Лучший член Curr. 2013;71:33–58. [PubMed] [Google Scholar]

18. Шим А.Х., Тирадо-Ли Л., Пракрия Структурно-функциональные механизмы регуляции каналов CRAC. Дж Мол Биол. 2014; 427:77–93. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

19. Dickson EJ, Duman JG, Moody MW, Chen L, Hille B. Orai-STIM-опосредованное высвобождение Ca 2+ из секреторных гранул, выявленное с помощью целевого Ca 2+ и pH-зонда. Proc Natl Acad Sci USA. 2012;109:E3539–E3548. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

20. Nunes P, Cornut D, Bochet V, Hasler U, Oh-hora M, Waldburger JM, Demaurex N. STIM1 сопоставляет ER с фагосомами, генерируя Ca 2+ горячих точек, которые усиливают фагоцитоз. Карр Биол. 2012; 22:1990–1997. [PubMed] [Google Scholar]

21. Stiber J, Hawkins A, Zhang ZS, Wang S, Burch J, Graham V, Ward CC, Seth M, Finch E, Malouf N, Williams RS, Eu JP, Rosenberg Передача сигналов P. STIM1 контролирует депо-управляемое поступление кальция, необходимого для развития и сократительной функции скелетных мышц. Nat Cell Biol. 2008; 10: 688–697. [PMC бесплатная статья] [PubMed] [Google Scholar]

22. Лыфенко А.Д., Дирксен Р.Т. Дифференциальная зависимость входа Ca 2+ , связанного с депо, и связанного с возбуждением в скелетных мышцах от STIM1 и Orai1. Дж. Физиол. 2008; 586:4815–4824. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

23. Эдвардс Дж. Н., Мерфи Р. М., Калли Т. Р., фон Вегнер Ф., Фридрих О., Лауниконас Б. С. Сверхбыстрая активация и деактивация депо-управляемого проникновения Ca 2+ в скелетные мышцы. Клеточный кальций. 2010; 47: 458–467. [PubMed] [Google Scholar]

24. Launikonas BS, Murphy RM, Edwards JN. К роли депо-управляемого входа Ca 2+ в скелетные мышцы. Арка Пфлюгера. 2010; 460:813–823. [PubMed] [Google Scholar]

25. Darbellay B, Arnadeau S, Bader CR, Konig S, Bernheim L. STIM1L представляет собой новый актин-связывающий вариант, участвующий в быстром повторении Ca 9.0011 2+ выпуск. Джей Селл Биол. 2011;194:335–346. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

26. Wei-LaPierre L, Carrell EM, Boncompagni S, Protasi F, Dirksen RT. Зависимое от Orai1 поступление кальция способствует росту скелетных мышц и ограничивает утомляемость. Нац коммуна 2013. 2013;4:2805. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

27. Ву М.М., Бьюкенен Дж., Луйк Р.М., Льюис Р.С. Истощение запасов Ca 2+ вызывает накопление STIM1 в областях ER, тесно связанных с плазматической мембраной. Джей Селл Биол. 2006; 174: 803–813. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

28. Orci L, Ravazzola M, Le Coadic M, Shen WW, Demaurex N, Cosson P. STIM1-индуцированные прекортикальные и кортикальные субдомены эндоплазматического ретикулума. Proc Natl Acad Sci USA. 2009;106:19358–19362. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

29. Luik RM, Wu MM, Buchanan J, Lewis RS. Элементарная единица депо-управляемого проникновения Ca 2+ : локальная активация каналов CRAC с помощью STIM1 в местах соединения ER-плазматической мембраны. Джей Селл Биол. 2006; 174: 815–825. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

30. Шарма С., Кинтана А., Финдли Г.М., Меттлен М., Бауст Б., Джейн М., Нильссон Р., Рао А., Хоган П.Г. Скрининг siRNA для активации NFAT идентифицирует септины как координаторы депо-управляемого входа Ca 2+ . Природа. 2013; 499: 238–242. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

31. Гудлур А., Кинтана А., Чжоу И., Хирве Н., Махапатра С., Хоган П.Г. STIM1 запускает перестройку ворот во внеклеточном устье канала ORAI1. Нац Коммуна 2014 Октябрь 9. 2014;5:5164. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

32. Сампиери А., Зепеда А., Асанов А., Вака Л. Визуализация сборки комплекса управляемых магазином каналов в режиме реального времени: идентификация SERCA2 как нового члена. Клеточный кальций. 2009; 45: 439–446. [PubMed] [Google Scholar]

33. Ву М.М., Ковингтон Э.Д., Льюис Р.С. Одномолекулярный анализ диффузии и захвата STIM1 и Orai1 в соединениях эндоплазматического ретикулума и плазматической мембраны. Мол Биол Селл. 2014;25:3672–3685. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

34. Ji W, Xu P, Li Z, Lu J, Liu L, Zhan Y, Chen Y, Hille B, Xu T, Chen L. Функциональная стехиометрия унитарный кальциевый канал, активируемый высвобождением кальция. Proc Natl Acad Sci USA. 2008; 105:13668–13673. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

35. Лур Г., Хейнс Л.П., Приор И.А., Герасименко О.В., Феске С., Петерсен О.Х., Бургойн Р.Д., Тепикин А.В. Свободные от рибосом терминали шероховатого ЭР позволяют формировать точки STIM1 и отделять STIM1 от рецепторов IP 3 . Карр Биол. 2009;19:1648–1653. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

36. Shen WW, Frieden M, Demaurex N. Ремоделирование эндоплазматического ретикулума во время поступления кальция в депо. Биол Клетка. 2011; 103: 365–380. [PubMed] [Google Scholar]

37. Джордано Ф., Сахеки Ю., Идевалл-Хагрен О., Коломбо С.Ф., Пирруччелло М., Милошевич И., Грачева Е.О., Багрянцев С.Н., Боргезе Н., Де Камилли П. PI(4,5) стр. 2 -зависимое и Ca 2+ -регулируемое взаимодействие ER-PM, опосредованное расширенными синаптотагминами. Клетка. 2013; 153:1494–1509. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

38. Várnai P, Tóth B, Tóth DJ, Hunyady L, Balla T. Визуализация и манипулирование сайтами контактов плазматической мембраны и ретикулума указывает на присутствие дополнительных молекулярных компонентов в пределах Комплекс СТИМ1-Орай1. Дж. Биол. Хим. 2007; 282:29678–29690. [PubMed] [Google Scholar]

39. Huang GN, Zeng W, Kim JY, Yuan JP, Han L, Muallem S, Worley PF. Карбоксильный конец STIM1 активирует нативные каналы SOC, Icrac и TRPC1. Nat Cell Biol. 2006; 8: 1003–1010. [PubMed] [Академия Google]

40. Liou J, Fivaz M, Inoue T, Meyer T. Визуализация живых клеток показывает последовательную олигомеризацию и локальное нацеливание на плазматическую мембрану молекулы стромального взаимодействия 1 после истощения запасов Ca 2+ . Proc Natl Acad Sci USA. 2007; 104:9301–9306. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]

41. Ercan E, Momburg F, Engel U, Temmerman K, Nickel W, Seedorf M. Консервативный, опосредованный липидами механизм сортировки дрожжей Ist2 и белков STIM млекопитающих для периферическая ЭР. Трафик. 2009 г.;10:1802–1818. [PubMed] [Google Scholar]

42. Чжоу Ю., Шринивасан П., Разави С., Сеймур С., Меранер П., Гудлур А., Статопулос П., Икура М., Рао А., Хоган П.Г. Начальная активация STIM1, регулятора поступления кальция в депо. Nat Struct Mol Biol. 2013;20:973–981. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

43. Bhardwaj R, Müller HM, Nickel W, Seedorf M. Олигомеризация и Ca 2+ /кальмодулин контролируют связывание ER Ca 2+ -сенсоры STIM1 и STIM2 к липидам плазматической мембраны. Biosci Rep 2013. 2013;33(5):e00077. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

44. Парк С.И., Гувер П.Дж., Маллинз Ф.М., Баххават П., Ковингтон Э.Д., Раунсер С., Вальц Т., Гарсия К.С., Долметч Р.Е., Льюис Р.С. STIM1 кластеризуется и активирует каналы CRAC посредством прямого связывания цитозольного домена с Orai1. Клетка. 2009; 136: 876–890. [PMC бесплатная статья] [PubMed] [Google Scholar]

45. Уолш С.М., Чванов М., Хейнс Л.П., Петерсен О.Х., Тепикин А.В., Бургойн Р.Д. Роль фосфоинозитидов в динамике STIM1 и депонированном поступлении кальция. Биохим Дж. 2009;425:159–168. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

46. Муик М., Фришауф И., Дерлер И., Фарнер М., Бергсманн Дж., Эдер П., Шиндл Р., Хеш С., Полцингер Б., Фрич Р., Кар Х., Мадл Дж., Грубер Х., Грошнер К. , Романин С. Динамика соединение предполагаемого спирально-скрученного домена ORAI1 со STIM1 опосредует активацию канала ORAI1. Дж. Биол. Хим. 2008; 283:8014–8022. [PubMed] [Google Scholar]

47. Наварро-Борелли Л., Сомасундарам А., Ямашита М., Рен Д., Миллер Р.Дж., Пракрия М. Взаимодействия STIM1-Orai1 и конформационные изменения Orai1, выявленные с помощью FRET-микроскопии живых клеток. Дж. Физиол. 2008; 586: 5383–5401. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

48. Барр В.А., Бернот К.М., Срикант С., Гвак Ю., Балагопалан Л., Риган К.К., Хелман Д.Дж., Соммерс С.Л., Охора М., Рао А., Самельсон Л.Е. Динамическое движение кальциевого сенсора STIM1 и кальциевого канала Orai1 в активированных Т-клетках: точки и дистальные колпачки. Мол Биол Селл. 2008;19:2802–2817. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

49. Frischauf I, Muik M, Derler I, Bergsmann J, Fahrner M, Schindl R, Groschner K, Romanin C. Молекулярные детерминанты связи между каналами STIM1 и Orai : дифференциальная активация каналов Orai1-3 мутантом спиральной катушки STIM1. Дж. Биол. Хим. 2009 г.;284:21696–21706. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

50. Calloway N, Vig M, Kinet J-P, Holowka D, Baird B. Молекулярная кластеризация STIM1 с Orai1/CRACM1 на плазматической мембране динамически зависит от истощения Ca 2+ накопителей и на электростатические взаимодействия. Мол Биол Селл. 2009; 20: 389–399. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

51. Yuan JP, Zeng W, Dorwart MR, Choi YJ, Worley PF, Muallem S. SOAR и многоосновные домены STIM1 блокируют и регулируют каналы Orai. Nat Cell Biol. 2009 г.;11:337–343. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

52. Zhou Y, Meraner P, Kwon HT, Machnes D, Oh-hora M, Zimmer J, Huang Y, Stura A, Rao A, Hogan PG. STIM1 управляет депо-управляемым кальциевым каналом ORAI1 in vitro. Nat Struct Mol Biol. 2010;17:112–116. [PMC бесплатная статья] [PubMed] [Google Scholar]

53. Muik M, Fahrner M, Schindl R, Stathopulos P, Frischauf I, Derler I, Plenk P, Lackner B, Groschner K, Ikura M, Romanin C. STIM1 соединяется с ORAI1 через внутримолекулярный переход в расширенную конформацию. EMBO J. 2011; 30: 1678–1689.. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

54. Prakriya M, Lewis RS. Разделение и характеристика токов через депо-управляемые каналы CRAC и Mg 2+ -ингибированные катионные (MIC) каналы. J Gen Physiol. 2002; 119: 487–507. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

55. Prakriya M, Lewis RS. Регулирование активности канала CRAC путем включения молчащих каналов в режим стробирования с высокой вероятностью открытия. J Gen Physiol. 2006; 128: 373–386. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

56. Еромин А.В., Роос Дж., Стаудерман К.А., Кахалан М.Д. Депо-управляемый кальциевый канал в клетках дрозофилы S2. J Gen Physiol. 2004; 123:167–182. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

57. Abell E, Ahrends R, Bandara S, Park BO, Teruel MN. Параллельная адаптивная обратная связь повышает надежность сигнальной системы Ca 2+ . Proc Natl Acad Sci USA. 2011;108:14485–14490. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

58. Fasolato C, Nilius B. Истощение запасов вызывает кальциевый ток, активируемый высвобождением кальция (I CRAC ) в макрососудистых эндотелиальных клетках; сравнение с линиями клеток Jurkat и эмбриональной почки. Арка Пфлюгера. 1998; 436: 69–74. [PubMed] [Google Scholar]

59. Бугай В., Алексеенко В., Зубов А., Глушанкова Л., Николаев А., Ван З., Казначеева Е., Безпрозванный И., Можаева Г.Н. Функциональные свойства эндогенных рецептор- и депо-управляемых каналов притока кальция в клетках HEK293. Дж. Биол. Хим. 2005; 280:16790–16797. [PubMed] [Google Scholar]

60. Mercer JC, DeHaven WI, Smyth JT, Wedel B, Boyles RR, Bird GS, Putney JW., Jr Большие избирательные потоки кальция, управляемые депо, из-за коэкспрессии Orai1 или Orai2 с внутриклеточным датчиком кальция Stim1. Дж. Биол. Хим. 2006;281:24979–24990. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

61. Gonzalez-Cobos JC, Zhang X, Zhang W, Ruhle B, Motiani RK, Schindl R, Muik M, Spinelli AM, Bisaillon JM, Shinde AV, Fahrner M , Singer HA, Matrougui K, Barroso M, Romanin C, Trebak M. Store-независимые каналы Orai1/3, активируемые интракринным лейкотриеном C 4 : роль в неоинтимальной гиперплазии. Цирк Рез. 2013; 112:1013–1025. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

62. Motiani RK, Hyzinski-Garcia MC, Zhang X, Henkel MM, Abdullaev IF, Kuo Y-H, Matrougui K, Mongin AA, Trebak M. STIM1 и Orai1 опосредуют CRAC активность каналов и необходимы для инвазии глиобластомы человека. Арка Пфлюгера. 2013;465:1249–1260. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

63. Peinelt C, Vig M, Koomoa DL, Beck A, Nadler MJS, Koblan-Huberson M, Lis A, Fleig A, Penner R, Kinet J-P. Усиление тока CRAC с помощью STIM1 и CRACM1 (Orai1). Nat Cell Biol. 2006; 8: 771–773. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

64. Soboloff J, Spassova MA, Tang XD, Hewavitharana T, Xu W, Gill DL. Orai1 и STIM восстанавливают функцию депо-управляемых кальциевых каналов. Дж. Биол. Хим. 2006; 281:20661–20665. [PubMed] [Академия Google]

65. Bird GS, Hwang SY, Smyth JT, Fukushima M, Boyles RR, Putney JW., Jr STIM1 — датчик кальция, предназначенный для цифровой сигнализации. Карр Биол. 2009;19:1724–1729. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

66. McKeown L, Moss NK, Turner P, Li J, Heath N, Burke D, O’Regan D, Gilthorpe MS, Porter KE, Beech DJ. Фактор роста, полученный из тромбоцитов, поддерживает накопленный кальций посредством некластеризующего механизма Orai1, но вызывает кластеризацию, если эндоплазматический ретикулум подвергается стрессу из-за истощения запасов. Цирк Рез. 2012; 111:66–76. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

67. Allbritton NL, Meyer T, Stryer L. Диапазон действия мессенджера иона кальция и инозитол 1,4,5-трифосфата. Наука. 1992; 258:1812–1815. [PubMed] [Google Scholar]

68. Donnadieu E, Bismuth G, Trautmann A. Потоки кальция в Т-лимфоцитах. Дж. Биол. Хим. 1992; 267:25864–25872. [PubMed] [Google Scholar]

69. Bauer PJ. Профиль локальной концентрации Ca вблизи кальциевого канала. Клеточная биохимия Биофиз. 2001; 35:49–61. [PubMed] [Google Scholar]

70. Баутиста Д.М., Хот М., Льюис Р.А. Усиление динамики и стабильности передачи сигналов кальция за счет замедленной модуляции кальций-АТФазы плазматической мембраны в Т-клетках человека. Дж. Физиол. 2002; 541: 877–89.4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

71. Bautista DM, Lewis RS. Модуляция активности кальций-АТФазы плазматической мембраны локальными кальциевыми микродоменами вблизи каналов CRAC в Т-клетках человека. Дж. Физиол. 2004; 556: 805–817. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

72. Gilabert JA, Parekh AB. Дышащие митохондрии определяют характер активации и инактивации депо-управляемого Ca 2+ тока I CRAC . EMBO J. 2000; 19: 6401–6407. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

73. Хот М., Баттон Д.С., Льюис Р.С. Митохондриальный контроль ворот кальциевых каналов: механизм устойчивой передачи сигналов и активации транскрипции в Т-лимфоцитах. Proc Natl Acad Sci USA. 2000;97:10607–10612. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

74. Zweifach A, Lewis RS. Медленная кальций-зависимая инактивация кальциевого тока, активируемого истощением. Магазинозависимые и -независимые механизмы. Дж. Биол. Хим. 1995; 279:14445–14451. [PubMed] [Google Scholar]

75. Hoth M, Fanger CM, Lewis RS. Митохондриальная регуляция депо-управляемой передачи сигналов кальция в Т-лимфоцитах. Джей Селл Биол. 1997;137:633–648. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

76. Glitsch MD, Bakowski D, Parekh AB. Депо-управляемый вход Ca 2+ зависит от поглощения Ca 2+ митохондриями. EMBO J. 2002; 21: 6744–6754. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

77. Giacomello M, Drago I, Bortolozzi M, Scorzeto M, Gianelle A, Pizzo P, Pozzan T. Ca 2+ горячих точек на поверхности митохондрий путем мобилизации Ca 2+ из депо, но не путем активации депо-управляемого Ca 2+ каналов. Мол Ячейка. 2010; 38: 280–290. [PubMed] [Google Scholar]

78. Spät A, Szanda G, Csordás G, Hajnóczky G. Зависимые от высокого и низкого уровня кальция механизмы митохондриальной передачи сигналов кальция. Клеточный кальций. 2008;44:51–63. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

79. Korzeniowski MK, Szanda G, Balla T, Spät A. Депо-управляемый приток Ca2+ и субплазмалеммальные митохондрии. Клеточный кальций. 2009; 46:49–55. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

80. Zweifach A, Lewis RS. Быстрая инактивация кальциевого тока, активируемого истощением (I CRAC ) из-за местной обратной связи кальция. J Gen Physiol. 1995; 105: 209–226. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

81. Fagan KA, Mons N, Cooper DMF. Зависимость Са 2+ -ингибируемой аденилатциклазы клеток глиомы С6-2В от емкостного входа Са 2+ . Дж. Биол. Хим. 1998; 273:9297–9305. [PubMed] [Google Scholar]

82. Willoughby D, Cooper DMF. Организация и регуляция Ca 2+ аденилатциклаз в микродоменах цАМФ. Physiol Rev. 2007; 87:965–1010. [PubMed] [Google Scholar]

83. Martin ACL, Willoughby D, Ciruela A, Ayling LJ, Pagano M, Wachten S, Tengholm A, Cooper DMF. Емкостный вход Ca 2+ через Orai1 и стромально взаимодействующую молекулу 1 (STIM1) регулирует аденилатциклазу типа 8. Mol Pharmacol. 2009; 75: 830–842. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

84. Ng SW, Nelson C, Parekh AB. Связывание микродоменов Ca 2+ с пространственно и во времени различными клеточными ответами с помощью тирозинкиназы Syk. Дж. Биол. Хим. 2009 г.;284:24767–24772. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

85. Кар П., Нельсон С., Парех А.Б. Селективная активация фактора транскрипции NFAT1 кальциевыми микродоменами вблизи каналов Ca 2+ , активируемых высвобождением Ca 2+ (CRAC). Дж. Биол. Хим. 2011; 286:14795–14803. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

86. Chang WC, Di Capite J, Singaravelu K, Nelson C, Halse V, Parekh AB. Локальный приток Ca 2+ через Ca 2+ , активированный высвобождением Ca 2+ (CRAC) каналов стимулирует выработку внутриклеточного мессенджера и межклеточного провоспалительного сигнала. Дж. Биол. Хим. 2008; 283:4622–4631. [PubMed] [Google Scholar]

87. Cheng KT, Liu X, Ong HL, Swaim W, Ambudkar IS. Локальное проникновение Ca 2+ через Orai1 регулирует рекрутирование TRPC1 на плазматической мембране и контролирует цитозольные сигналы Ca 2+ , необходимые для специфических клеточных функций. PLoS Biol 2011. 2011;9(3):e1001025. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

88. Willoughby D, Everett KL, Halls ML, Pacheco J, Skroblin P, Vaca L, Klussmann E, Cooper DMF. Прямое связывание между Orai1 и AC8 обеспечивает динамическое взаимодействие между Ca 2+ и передачей сигналов cAMP. Научный сигнал. 2012;5:ra29. (2012) [PubMed] [Google Scholar]

89. Кар П., Саманта К., Крамер Х., Моррис О., Баковски Д., Парех А.Б. Динамическая сборка мембранного сигнального комплекса обеспечивает избирательную активацию NFAT с помощью Orai1. Карр Биол. 2014; 24:1361–1368. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

90. Уиллоуби Д., Вахтен С., Масада Н., Купер Д.М.Ф. Прямая демонстрация дискретных микродоменов Ca 2+ , связанных с различными изоформами аденилатциклазы. Дж. Клеточные науки. 2010; 123:107–117. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

91. Willoughby D, Masada N, Crossthwaite AJ, Ciruela A, Cooper DMF. Локализованная экспрессия обменника 1 Na + /H + защищает аденилатциклазы, регулируемые Ca 2+ , от изменений внутриклеточного pH. Дж. Биол. Хим. 2005; 280:30864–30872. [PubMed] [Академия Google]

92. Ведель Б., Бойлз Р.Р., Путни Дж.В., младший, Берд Г.С. Роль депо-управляемых белков входа кальция Stim1 и Orai1 в колебания кальция, стимулированные мускариновыми холинергическими рецепторами, в эмбриональных клетках почек человека. Дж. Физиол. 2007; 579: 679–689. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

93. Kar P, Nelson C, Parekh AB. Каналы CRAC управляют цифровой активацией и обеспечивают аналоговый контроль и синергию с Ca 2+ -зависимой регуляцией генов. Карр Биол. 2012; 22: 242–247. [PubMed] [Академия Google]

94. Brandman O, Liou J, Park WS, Meyer T. STIM2 представляет собой регулятор обратной связи, который стабилизирует базальные уровни цитозольного и эндоплазматического ретикулума Ca 2+ . Клетка. 2007; 131:1327–1339. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

95. Охора М., Ямасита М., Хоган П.Г., Шарма С., Ламперти Э., Чанг В., Пракрия М., Феске С., Рао А. Двойные функции эндоплазматического датчики кальция ретикулума STIM1 и STIM2 в активации и толерантности Т-клеток. Нат Иммунол. 2008; 9: 432–443. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

96. Thiel M, Lis A, Penner R. STIM2 управляет колебаниями Ca 2+ через вход Ca 2+ , управляемый хранилищем, вызванный умеренным истощением запасов. Дж. Физиол. 2013; 591:1433–1445. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

97. Малли Р., Фриден М., Хункова М., Тренкер М., Грайер В.Ф. Заполнение эндоплазматического ретикулума Ca 2+ в значительной степени сохраняется, хотя вход Ca 2+ в эндотелиальные клетки снижен. Клеточный кальций. 2007; 41: 63–76. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

98. Alonso MT, Manjarres IM, Garcia-Sancho J. Привилегированная связь между входом Ca 2+ через депо Ca 2+ , управляемым плазматической мембраной, и насосом Ca 2+ эндоплазматического ретикулума. Мол Селл Эндокринол. 2012; 353:37–44. [PubMed] [Google Scholar]

99. Гарсия-Санчо Дж. Связь входа кальция в плазматической мембране с поглощением кальция эндоплазматическим ретикулумом и митохондриями. Дж. Физиол. 2014; 592: 261–268. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

100. Jousset H, Frieden M, Demaurex N. Нокдаун STIM1 показывает, что депо-управляемые каналы Ca 2+ , расположенные близко к сарко/эндоплазматической Ca 2+ АТФазам (SERCA), молча пополняют эндоплазматический ретикулум. Дж. Биол. Хим. 2007; 282:11456–11464. [PubMed] [Google Scholar]

101. Lytton J, Westlin M, Burk SE, Shull GE, MacLennan DH. Функциональные сравнения между изоформами семейства саркоплазматического или эндоплазматического ретикулума кальциевых насосов. Дж. Биол. Хим. 1992; 267:14483–14489. [PubMed] [Google Scholar]

102. Минс С., Смит А.Дж., Шеперд Дж., Шадид Дж., Фаулер Дж., Войцикевич Р.Дж.Х., Мазель Т., Смит Г.Д., Уилсон Б.С. Реакционно-диффузионное моделирование динамики кальция с реалистичной геометрией ЭР. Биофиз Дж. 2006; 91: 537–557. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

103. Vaca L. SOCIC: комплекс притока кальция с запасом. Клеточный кальций. 2010;47:199–209. [PubMed] [Google Scholar]

104. Соболов Дж., Спасова М.А., Хевавитарана Т., Хе Л.П., Сюй В., Джонстон Л.С., Дзиадек М.А., Гилл Д.Л. STIM2 является ингибитором STIM1-опосредованного депо-управляемого Ca 9.0011 2+ запись. Карр Биол. 2006; 16:1465–1470. [PubMed] [Google Scholar]

105. Dupont G, Combettes L, Bird GS, Putney JW. Кальциевые колебания. Колд Спринг Харб Перспект Биол. 2011;3:a004226. 2011. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]

106. Bird GS, Putney JW., Jr Емкостный вход кальция поддерживает кальциевые колебания в эмбриональных клетках почек человека. Дж. Физиол. 2005; 562: 697–706. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

107. Di Capite J, Ng SW, Parekh AB. Расшифровка цитоплазматического Ca 2+ колебаний через пространственную сигнатуру управляет экспрессией генов. Карр Биол. 2009; 19: 853–858. [PubMed] [Google Scholar]

108. Korzeniowski MK, Popovic MA, Szentpetery Z, Varnai P, Stojilkovic SS, Balla T. Зависимость STIM1/Orai1-опосредованного входа кальция в фосфоинозитиды плазматической мембраны. Дж. Биол. Хим. 2009; 284:21027–21035. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

109. Calloway N, Owens T, Corwith K, Rodgers W, Holowka D, Baird B. Стимулированная ассоциация STIM1 и Orai1 регулируется балансом PtdIns(4, 5)п 2 между отдельными пулами мембран. Дж. Клеточные науки. 2011;124:2602–2610. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

110. Малет Дж., Чой С., Муаллем С., Ахуджа М. Транслокация между PI(4,5)P 2 -бедный и PI(4,5)P 2 -богатые микродомены во время истощения хранилища определяют конформацию STIM1 и ворота Orai1. Nat Commun 2014 17 декабря 2014; 5: 5843. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

111. Chang CL, Hsieh TS, Yang TT, Rothberg KG, Azizoglu DB, Volk E, Liao JC, Liou J. Обратная регуляция индуцированного рецептором Ca 2+ передача сигналов, опосредованная E-Syt1 и Nir2 в соединениях эндоплазматического ретикулума и плазматической мембраны. Cell Rep. 2013; 5:813–825. [PubMed] [Google Scholar]

112. Schauder CM, Wu X, Saheki Y, Narayanaswamy P, Torta F, Wenk MR, De Camilli P, Reinisch KM. Структура расширенного синаптотагмина, связанного с липидами, указывает на его роль в переносе липидов. Природа. 2014; 510:552–555. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

113. Fernandez-Busnadiego R, Saheki Y, De Camilli P. Трехмерная архитектура расширенных синаптотагмин-опосредованных участков контакта эндоплазматического ретикулума с плазматической мембраной. Proc Natl Acad Sci USA. 2015;112:E2004–E2013. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

Визуализация данных в Python с помощью plt.scatter() — Real Python